STAPHYLOCOCCUS AUREUS EN MICROBIOLOGÍA DE ALIMENTOS (Segunda parte)

in stem-espanol •  14 days ago 

¡Hola Amigos! En esta oportunidad quiero compartir con todos ustedes un tema el cual he podido estudiar a través de mis pasantías en Microbiología de Alimentos; se trata de una bacteria que tiene la capacidad de producir una enterotoxina en el hombre y causarle intoxicación, como es el caso de Staphylococcus aureus.


Staphylococcus aureus es una bacteria muy habitual y presente en casi la mitad de la población mundial. Es una de las fuentes más habituales de contaminación alimentaria y, por lo tanto, un punto al que el manipulador de alimentos debe prestar una especial atención.

En el primer post pudimos conocer las generalidades de este microorganismo, la forma en que puede contaminar los alimentos, los síntomas asociados y las medidas de prevención.

En esta segunda parte nos enfocaremos en estudiar la forma en que se puede identificar este microorganismo y aquellas pruebas necesarias para su confirmación en el laboratorio de Microbiología.

¡Espero les sea útil la información! Iniciemos.


DETERMINACIÓN DE S. aureus EN ALIMENTOS

Para la detección de Staphylococcus aureus en alimentos nos basaremos en la Norma Venezolana. Covenin 1292-89; la cual describe lo siguiente:

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Imagen realizada por: @estefanyd26 (PowerPoint 2013)

Preparación de la muestra:

  • Consiste en pesar la cantidad según el producto que se esté analizando, en la mayoría de los casos corresponde a 25g de la muestra.

Asilamiento selectivo:

  • Se debe utilizar un medio selectivo sólido, el cual inhibe el desarrollo de géneros diferentes al Staphylococcus, pero además permite reconocer el desarrollo característico del microorganismo buscado.
  • Se agrega 1 ml de la muestra o diluciones de la misma sobre la superficie de los medios (agar Baird Parker) con la ayuda de una varilla de vidrio hasta la absorción completa.
  • Incubación de las placas invertidas a 35-37°C durante 24-48 h.
  • Al finalizar el período de incubación se eligen las placas que tengan 20-200 UFC con las características típicas: colonias negras, brillantes, rodeadas de una zona reducida blanca, y por una zona de aclaramiento que se extiende en el medio opaco.

RECUPERACIÓN DE LA CEPA

lamina 2.jpg

Imagen realizada por: @estefanyd26 (PowerPoint 2013)

Este paso permite restaurar las células dañadas de Staphylococcus aureus

  • Seleccionar al menos 2 colonias típicas de cada uno de los medios y se transfieren a 0,2 – 0,3 ml de caldo infusión cerebro corazón.
  • Se siembra a continuación en un agar nutritivo tomando con la ayuda de un asa del caldo ICC (infusión cerebro corazón).
  • Se incuban ambos medios a 35-37° x 18-24 h.
  • Al final de la incubación se realiza una coloración de Gram con el cultivo de agar nutritivo; si se observa la morfología típica de S.aureus Cocos Gram Positivos de 0,8-1,0 um de diámetro, solos, en pares o más típicamente formando racimos de uva se procede a realizar la prueba de la coagulasa.

PRUEBA DE LA COAGULASA

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Imagen realizada por: @estefanyd26 (PowerPoint 2013)

  • Añadir 0,5 ml de plasma al cultivo ICC y se mezcla cuidadosamente.
  • Se incuba a 35-37°C y se examina inclinando suavemente los tubos, durante un lapso de 6 horas para observar la formación de un coágulo.
  • En caso dudoso se continua la incubación a la misma temperatura por no más de 24 h. para determinar el grado de positividad.

norma covenin positivo.png

Fuente: Norma Venezolana Covenin 1292-89

Se considera como positivo un coágulo de 3+ o 4+.
Negativo: no evidencia la formación de fibrina.
1+: pequeños coágulos dispersos.
2+: pequeños coágulos constituidos.
3+: coágulo grande bien constituido.
4+: contenido total del tubo de coagula y no se desplaza cuando se invierte el tubo.


Las pruebas que presenten grado de positividad de 2+ o más cruces deben ser confirmados por la prueba de la nucleasa termoestable.


PRUEBA DE LA TERMONUCLEASA

lamina 4.jpg

Imagen realizada por: @estefanyd26 (PowerPoint 2013)

  • Preparar una lámina portaobjetos añadiendo en la superficie 3ml de agar ADN-azul de toluidina.
  • Cuando el agar solidifique realizar orificios de 2mm de diámetro sobre la superficie del mismo con ayuda de una pipeta Pasteur (10-12 orificios por lámina).
  • Se remueven los pequeños tacos de agar por aspiración mediante vacío.
  • Añadir a cada orificio aprox. 0.01ml del cultivo en caldo ICC previamente calentado en baño de agua hirviente por 15 min.
  • Incubar las láminas en una cámara húmeda durante 4h a 37°C.
  • Observar las láminas.
  • Se considera un resultado Positivo la aparición de halos rosados que se extienden al menos 1mm desde la periferia de los orificios.


Nota: Ambas pruebas deben realizarse incluyendo controles negativos y cultivos controles de S.aureus positivos.


Queridos Amigos, hasta aquí la segunda parte, espero que les guste y sea de utilidad. ¡Hasta una próxima oportunidad!


REFERENCIAS



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